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奧林巴斯顯微鏡：熒光顯微鏡解剖式講解
到其他模式基于宏觀上的試樣的功能，如相位梯度，光的吸收，和雙折射的光學顯微鏡相比，能夠僅僅基于熒光發射性能的一個單一的分子種類的分布成像的熒光顯微鏡。因此，用熒光顯微鏡，與特定的熒光基團標記的胞內組分的精確位置進行監測，以及其相關聯的擴散系數，傳輸特性，以及與其它生物分子相互作用。此外，在熒光顯著的反應，以本地化的環境變量可以調查了pH值，粘度，折射率，離子濃度，膜電位，和在活細胞和組織中的極性溶
2020-09-04
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徠卡顯微鏡：多波長在熒光顯微鏡落射照明
熒光是一個過程，其中已吸收的光（光子）后的物質emitts的輻射的波長（顏色），其中長于吸收光，這個排放停止后立即停止激發。這種現象是熒光顯微鏡及其應用的基本元素。除此之外，“古典”在光學顯微鏡下的熒光激發，有可能兩個或多個光子具有較長wavengths比發射的激發激光共聚焦掃描顯微鏡通過現代技術來獲得相同的發光效果。 熒光作為autofluorescenc的生物和/或無機結構或所謂的次級熒
2020-09-04
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徠卡顯微鏡 - 熒光壽命成像之FLIM-FRET應用淺析
FRET 技術（Fluorescence Resonance Energy Transfer）能夠在突破傳統光學分辨率極限的條件下研究蛋白互作、構象變化（<10 nm），或者通過構建 FRET 探針監測分子變化，因而在諸多研究領域得到了“科研大拿”們的青睞
2020-09-04 admin
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奧林巴斯顯微鏡：熒光壽命成像顯微術（FLIM）
觀察生物材料（如蛋白質，脂質，核酸，和離子）的分布的組織和細胞的研究領域中，積極地使用多顏色用熒光染料染色。熒光觀察的檢測技術已經發展到一個單一的熒光染料分子的水平下最好的情況下，可以檢測到。本節回顧熒光壽命成像顯微鏡（FLIM），一個新的熒光顯微鏡技術的幾個重要方面。此外多色染色，還可以利用熒光壽命成像可視化的因素的影響，也就是說，在分子周圍的環境的狀態的染料分子的熒光壽命特性。波長光譜傳統的熒
2020-09-04
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![尼康顯微鏡：在多光子激發顯微術的基本原理和應用]()
尼康顯微鏡：在多光子激發顯微術的基本原理和應用
雙光子激發顯微鏡（也稱為非線性的，多光子或雙光子激光掃描顯微鏡）是一種替代共聚焦和去卷積顯微鏡三維成像，提供了明顯的優勢。特別是，雙光子激發成像擅長的活細胞，尤其是在完整的組織，如腦切片，胚胎，整個器官，甚至整個動物。有效靈敏度的熒光顯微鏡，特別是與厚的樣品，通常是有限的焦點外的喇叭形。此限制，大大降低了在共聚焦顯微鏡中，通過使用共焦針孔拒絕焦點外的背景熒光，并產生薄（小于1微米），unblurr
2020-09-04
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![徠卡顯微鏡：活細胞成像技術]()
徠卡顯微鏡：活細胞成像技術
復雜和/或快速的細胞動力學的理解是探索生物過程的一個重要步驟。因此，今天的生命科學研究越來越注重動態過程，如細 胞遷移，細胞，器官或整體動物形態學變化和生理（如細胞內的離子成分的變化）事件實時的活標本。解決這些具有挑戰性的需求的方法之一是采用若干統稱活細胞成像的光學方法。活細胞成像活細胞的動力學過程，而不是給細胞的當前狀態的一個“快照” -允許調查將改編成電影的快照。活細胞成像提供了空間和時間信息
2020-09-04
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尼康顯微鏡，熒光共振能量轉移（FRET）顯微鏡與熒光蛋白的基本原理
在活細胞中，動態的蛋白質之間的相互作用被認為是發揮了關鍵作用，調節許多信號轉導通路，以及廣泛的其他關鍵流程。 在過去，經典的生物化學方法，闡明了這種相互作用的機制是司空見慣，但是弱的或短暫的相互作用，可能會發生細胞內的天然環境是這些技術通常是透明的。 例如，合作一直懷疑蛋白本地化合作伙伴使用固定細胞免疫熒光顯微鏡檢查相互作用在原地 ，并已提交了大量的文獻報道基于這種技術的常用方法。 然而，由于在
2020-09-04
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![徠卡顯微鏡- 熒光成像新維度——超快速熒光壽命成像]()
徠卡顯微鏡- 熒光成像新維度——超快速熒光壽命成像
熒光壽命是熒光基團在通過發射熒光光子返回基態之前在其激發態下保持平均多長時間的量度。不同熒光基團激發態停時間不同，大多數生物熒光素的熒光壽命時間在 0.2 - 20 ns。
2020-09-04 admin
