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奧林巴斯顯微鏡:熒光顯微鏡解剖式講解
到其他模式基于宏觀上的試樣的功能,如相位梯度,光的吸收,和雙折射的光學顯微鏡相比,能夠僅僅基于熒光發射性能的一個單一的分子種類的分布成像的熒光顯微鏡。因此,用熒光顯微鏡,與特定的熒光基團標記的胞內組分的精確位置進行監測,以及其相關聯的擴散系數,傳輸特性,以及與其它生物分子相互作用。此外,在熒光顯著的反應,以本地化的環境變量可以調查了pH值,粘度,折射率,離子濃度,膜電位,和在活細胞和組織中的極性溶
2020-09-04
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奧林巴斯顯微鏡:熒光和相襯的組合
光漂白的影響減到最小,熒光顯微鏡可以不破壞與其他技術相結合的熒光染料,如微分干涉相差(DIC),霍夫曼調制對比度(HMC),傳送暗場照明,相位相反的。我們的想法是找到一個感興趣的具體領域使用非破壞性的對比度增強技術,然后在一個標本,沒有搬遷的標本,在顯微鏡切換熒光模式。這種類型的一個典型的實驗的結果示于圖1。圖1(a)示出了使用相位對比光學成像的3T3成纖維細胞的單層組織培養。細胞行成立由美國國立
2020-09-04
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徠卡顯微鏡:多波長在熒光顯微鏡落射照明
熒光是一個過程,其中已吸收的光(光子)后的物質emitts的輻射的波長(顏色),其中長于吸收光,這個排放停止后立即停止激發。這種現象是熒光顯微鏡及其應用的基本元素。除此之外,“古典”在光學顯微鏡下的熒光激發,有可能兩個或多個光子具有較長wavengths比發射的激發激光共聚焦掃描顯微鏡通過現代技術來獲得相同的發光效果。 熒光作為autofluorescenc的生物和/或無機結構或所謂的次級熒
2020-09-04
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徠卡顯微鏡:熒光簡介
熒光是由喬治·加布里埃爾·斯托克斯在1852年首次被發現。他指出,螢石開始發光后,用紫外光照射。熒光是一種形式的,它描述了由輻射產生的光子的材料被光照射后的光致發光。所發射的光具有比激發光的波長較長的。這種效應被稱為斯托克斯位移(Stokes shift)。 作為一種工具,熒光顯微鏡被廣泛用于熒光顯微鏡觀察特定的分子的分布的一個重要工具。大多數細胞中的分子不發出熒光。因此,他們被稱為熒光染料的熒
2020-09-04
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尼康顯微鏡:EPI-熒光照明光路
直到最近,熒光照明是一個選項僅適用于配備專門的高數值孔徑物鏡的研究級復合顯微鏡。這一技術在立體顯微鏡的需要不斷升級與引進的編碼基因和生物特異性熒光蛋白GFP(綠色熒光蛋白)等。體視顯微鏡的應用GFP觀察現在是如此普遍,立體聲熒光照明,更經常被稱為GFP照明,即使他們可以利用許多其他應用在生命科學和電子制造業。大幼蟲,線蟲,斑馬魚,卵母細胞和成熟的昆蟲標本,如可以方便地選擇和操作時,他們GFP標記的
2020-09-04
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奧林巴斯顯微鏡:什么是熒光?
當試樣,活的或非活的,有機或無機,吸收和后來重新煥發燈,這個過程描述為光致發光。如果光的發射,激發能量(光)后,便不再持續幾秒鐘,該現象被稱為磷光。熒光,在另一方面,描述了光發射的激發光的吸收僅在繼續。激發光的吸收和再輻射光熒光發射的時間間隔是異常持續時間短,一般不超過百萬分之一秒。熒光的現象是19世紀所產生。英國科學家Sir George G. Stokes首先觀察礦物螢石具有熒光,用紫外光照射
2020-09-04
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尼康顯微鏡,熒光共振能量轉移(FRET)顯微鏡與熒光蛋白的基本原理
在活細胞中,動態的蛋白質之間的相互作用被認為是發揮了關鍵作用,調節許多信號轉導通路,以及廣泛的其他關鍵流程。 在過去,經典的生物化學方法,闡明了這種相互作用的機制是司空見慣,但是弱的或短暫的相互作用,可能會發生細胞內的天然環境是這些技術通常是透明的。 例如,合作一直懷疑蛋白本地化合作伙伴使用固定細胞免疫熒光顯微鏡檢查相互作用在原地 ,并已提交了大量的文獻報道基于這種技術的常用方法。 然而,由于在
2020-09-04
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尼康顯微鏡的熒光原位雜交技術
?近四分之一個世紀以來已通過引入原位雜交的方法檢測和研究染色體和細胞的DNA序列在文獻中出現的第一個研究文章。?然而,在過去的15年里,發生了一場革命,光鏡下通過熒光技術的發展,允許前所未有的輕松,精密,準確定位,識別和生物醫學樣品的基因構成數據記錄。通過同時使用多個熒光色原位雜交的力量得以極大地延長。?多色熒光原位雜交(FISH),在其最簡單的形式中,可以用于識別盡可能多的雜交中使用的不同的熒光
2020-09-04