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徠卡顯微鏡，FLCS - 熒光相關光譜進展
在單分子水平的表征物質已成為的標準劇目科研院所的一部分。最常用的方法之一，是熒光相關光譜（FCS），它可以用來檢查的動態性和在溶液中的熒光分子濃度。本文介紹了一種測量技術，結合了經典的FCS測量與時間相關的單光子計數，以獲得更精確??和可靠的結果。FCS是經常被用來研究的分子在溶液中的動態過程。然而，實驗因素嚴重影響的分析，如FCS數據記錄。典型的因素包括工件的測量系統中，雜散光的熒光基團的三線態
2020-09-04
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奧林巴斯顯微鏡：熒光顯微鏡解剖式講解
到其他模式基于宏觀上的試樣的功能，如相位梯度，光的吸收，和雙折射的光學顯微鏡相比，能夠僅僅基于熒光發射性能的一個單一的分子種類的分布成像的熒光顯微鏡。因此，用熒光顯微鏡，與特定的熒光基團標記的胞內組分的精確位置進行監測，以及其相關聯的擴散系數，傳輸特性，以及與其它生物分子相互作用。此外，在熒光顯著的反應，以本地化的環境變量可以調查了pH值，粘度，折射率，離子濃度，膜電位，和在活細胞和組織中的極性溶
2020-09-04
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尼康顯微鏡：三色成像激光掃描共聚焦顯微鏡的方法及應用
激光掃描共聚焦顯微鏡（LSCM）通常用于產生數字圖像的單，雙，三熒光標記的樣本。使用紅色，綠色和藍色（RGB）顏色的信息用于顯示多達三個標記細胞的熒光探針，任何共定位觀察到不同的加色的彩色圖像時，合并成一個分布單三色圖像。在本節中，我們提出了生產三色共聚焦圖像，采用了時下流行的圖像處理程序，Adobe公司的Photoshop先前公布的方法的簡化版本。此外，多個應用程序的顯示共聚焦圖像的三色的合并協
2020-09-04
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奧林巴斯顯微鏡：熒光和相襯的組合
光漂白的影響減到最小，熒光顯微鏡可以不破壞與其他技術相結合的熒光染料，如微分干涉相差（DIC），霍夫曼調制對比度（HMC），傳送暗場照明，相位相反的。我們的想法是找到一個感興趣的具體領域使用非破壞性的對比度增強技術，然后在一個標本，沒有搬遷的標本，在顯微鏡切換熒光模式。這種類型的一個典型的實驗的結果示于圖1。圖1（a）示出了使用相位對比光學成像的3T3成纖維細胞的單層組織培養。細胞行成立由美國國立
2020-09-04
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![奧林巴斯顯微鏡：什么是掃描近場光學顯微鏡（SNOM）]()
奧林巴斯顯微鏡：什么是掃描近場光學顯微鏡（SNOM）
在衍射極限的光學顯微鏡的一個基本原則要求的空間分辨率的圖像的入射光的波長，并通過聚光鏡和物鏡系統的數值孔徑是有限的。發展近場掃描光學顯微鏡（NSOM），也經常被稱為掃描近場光學顯微鏡（SNOM），一直需要一種成像技術，實現空間的同時，保留了光學顯微鏡的方法所帶來的各種對比機制驅動超越了經典的光學衍射極限的分辨率。掃描近場光學顯微鏡分類之間更廣泛的器樂組統稱為掃描探針顯微鏡（SPMS）。所有的SPM
2020-09-04
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![徠卡顯微鏡：多波長在熒光顯微鏡落射照明]()
徠卡顯微鏡：多波長在熒光顯微鏡落射照明
熒光是一個過程，其中已吸收的光（光子）后的物質emitts的輻射的波長（顏色），其中長于吸收光，這個排放停止后立即停止激發。這種現象是熒光顯微鏡及其應用的基本元素。除此之外，“古典”在光學顯微鏡下的熒光激發，有可能兩個或多個光子具有較長wavengths比發射的激發激光共聚焦掃描顯微鏡通過現代技術來獲得相同的發光效果。 熒光作為autofluorescenc的生物和/或無機結構或所謂的次級熒
2020-09-04
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![尼康顯微鏡：活細胞顯微漂移校正焦點]()
尼康顯微鏡：活細胞顯微漂移校正焦點
直到20世紀80年代末，大多數生命科學的研究生物的結構復雜的細節，捕捉各種使用固定和染色標本（實際上，非生物）的細胞學特征的單一快照。然而，在過去的幾十年中，在生物科學和醫學的研究已經在很大程度上轉移了重點調查浩大的時間尺度上，從幾毫秒到幾小時不等的生命系統的分子，細胞和整個生物體水平上發生的動態過程。過渡到活細胞成像的司機已經先進的顯微儀器和更敏感的數碼相機的發展，以及新的合成和基因編碼的熒光基
2020-09-04
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![奧林巴斯顯微鏡：熒光和DIC的組合]()
奧林巴斯顯微鏡：熒光和DIC的組合
光漂白的影響減到最小，熒光顯微鏡可以不破壞與其他技術相結合的熒光染料，如微分干涉相差（DIC），霍夫曼調制對比度（HMC），傳送暗場照明，相位相反的。我們的想法是找到一個感興趣的具體領域使用非破壞性的對比度增強技術，然后在一個標本，沒有搬遷的標本，在顯微鏡切換熒光模式。這種類型的一個典型的實驗的結果示于圖1。圖1（a）示出的大鼠視網膜視神經神經節組織薄截面使用微分干涉對比成像。顯微照片，圖1（b）
2020-09-04
