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![奧林巴斯顯微鏡：光學熒光筆熒光蛋白]()
奧林巴斯顯微鏡：光學熒光筆熒光蛋白
熒光蛋白的發現和后續優化中的遺傳性質的這些顯著的探針來生成各種各樣的發射帶寬配置已擴展生物學家在活細胞中具有高時空分辨率的可視化，跟蹤和量化分子事件的能力。熒光蛋白可以融合到幾乎任何感興趣的蛋白質或酶，礁珊瑚，水母和海葵物種的各種來自以分析在活細胞中蛋白質地理，運動，血統，和生物化學。在此方面，這些生物探針提供了一個重要的新的方法來了解蛋白質的功能，這是一個合乎邏輯的步驟細胞過程的調查，現在許多生
2020-09-03
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![奧林巴斯顯微鏡：熒光顯微鏡攝影的錯誤]()
奧林巴斯顯微鏡：熒光顯微鏡攝影的錯誤
顯微攝影在熒光照明條件下，提出了一套獨特冒充顯微鏡的特殊問題的情況。曝光時間往往是非常長的（在某些情況下運行多少秒到幾分鐘），試樣的熒光可能會在曝光過程中褪色，全黑的背景往往在不經意間光信號米建議過度曝光。此外，熒光的標本發出他們自己的光，和顆粒位于所需的焦點平面的上方和下方往往輻射光造成圖像細節模糊。盡管熒光圖像可能會顯得明亮時，通過顯微鏡目鏡（由于人眼對光線的敏感度的精致），它們通常需要較長的
2020-09-03
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![徠卡顯微鏡：選擇你的激發波長]()
徠卡顯微鏡：選擇你的激發波長
熒光壽命成像顯微術（FLIM）被廣泛應用于蛋白質相互作用量化測量FRET（福斯特共振能量轉移）發生的兩個熒光基團之間的間隔由幾納米。FLIM也被用來在大陣列的應用范圍從組織成像熒光探測環境。雖然時間相關的單光子計數（TCSPC）熒光壽命定量方法的選擇，它要求包括：i）一個脈沖激光源，2）光子計數卡，及iii）一個快速檢測的專用儀器。這種技術要求呈現TCSPC收購很難執行和/或縮小選擇可用熒光。徠卡
2020-09-03
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![徠卡顯微鏡：多波長在熒光顯微鏡落射照明]()
徠卡顯微鏡：多波長在熒光顯微鏡落射照明
熒光是一個過程，其中已吸收的光（光子）后的物質emitts的輻射的波長（顏色），其中長于吸收光，這個排放停止后立即停止激發。這種現象是熒光顯微鏡及其應用的基本元素。除此之外，“古典”在光學顯微鏡下的熒光激發，有可能兩個或多個光子具有較長wavengths比發射的激發激光共聚焦掃描顯微鏡通過現代技術來獲得相同的發光效果。 熒光作為autofluorescenc的生物和/或無機結構或所謂的次級熒光的
2020-09-03
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![尼康顯微鏡：反射共焦顯微鏡的基礎知識]()
尼康顯微鏡：反射共焦顯微鏡的基礎知識
當許多生物醫學研究認為“共聚焦顯微鏡”，他們通常有熒光成像技術的初衷。這個看似明顯的聯系，這是一個很好的理由。大部分常見的生物醫學應用共聚焦顯微鏡利用其的光學切片電源，結合精湛的特異性免疫熒光或熒光原位雜交（FISH），以產生改善乘標記的細胞和組織的圖像。可以利用共焦反射鏡，以收集更多信息相對點點額外的努力，因為從標本的技術要求最低的樣品制備和儀器重新配置。此外，未染色的組織的信息是現成的共焦反射
2020-09-03
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![徠卡顯微鏡：看著活細胞內分子運動]()
徠卡顯微鏡：看著活細胞內分子運動
新開發的RICS STED顯微鏡檢查法記錄在現場樣品分子的快速運動。卡爾斯魯厄理工學院（KIT）的研究人員通過光柵圖像相關光譜（RICS）的受激發射損耗熒光顯微鏡結合，開辟了新的應用在醫學研究中，如細胞膜的動態分析在高蛋白質濃度。 新的方法來測量活體標本的快速分子變動如何單個生物分子在活細胞，組織或生物體的移動？生物分子如何互動？要回答這些問題，在分子水平上更好地理解生命的過程。受激發射損耗熒光顯
2020-09-03
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![尼康顯微鏡：光譜成像和線性分解]()
尼康顯微鏡：光譜成像和線性分解
在過去的十年中，已經開發了廣泛的高性能熒光在熒光顯微鏡調查采用了先進的技術，如激光點掃描共聚焦，旋轉盤，多光子，總的內部反射。現在可用的先進探針基因編碼的熒光蛋白，半導體量子點，膜透性的合成熒光基團組成的混合動力系統，物鏡蛋白融合，和單機的人工合成，具有廣泛的物理和光譜性質。這些試劑能夠針對幾乎任何在活的或固定細胞中的蛋白質或肽的許多也是很有用的生物動力學指標。當用作單一的標簽，成像大多數熒光團很
2020-09-03
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![尼康顯微鏡：德塞拿蒙偏置遲緩DIC顯微鏡]()
尼康顯微鏡：德塞拿蒙偏置遲緩DIC顯微鏡
在傳統的微分干涉差顯微鏡（DIC）的系統設計，偏置相位差引入到翻譯的匹配（聚光鏡和物鏡）利用諾馬斯基或改性Wollaston棱鏡整個顯微鏡的光軸產生一個恒定的光程差的光學列車。也可以實現同樣的效果可以通過一個固定的諾馬斯基棱鏡系統中的應用和四分之一波長的相位差板與偏振器或分析儀一起組成的一個簡單的Sénarmont補償。尼康Eclipse E600顯微鏡系列圖1所示基本Sénarmont的配置為一
2020-09-03
